Эймерии википедия

Эймерии википедия

Eimeria
Eimeria максимумы ооцисты
Научная классификация
(Неоцениваемый): SAR
Тип: Apicomplexa
Учебный класс: Conoidasida
Порядок: Eucoccidiorida
Семья: Eimeriidae
Род: Eimeria
Schneider , 1875
Типовой вид
Eimeria falciformis

Eimeria является родом из apicomplexan паразитовкоторые включаютсебя различные видыспособных вызвать болезненный кокцидиоз у животныхтакие как крупные рогатый скот , птицы и мелкие жвачные животные , включая овца и коза . Eimeria видов считаются monoxenousпоскольку жизненный цикл завершаетсятечение одного хоста и stenoxenousпотому что ониправило, принимающей конкретные, хотя ряд исключений были идентифицированы. Виды этого рода заражать широкий спектр хозяев. Тридцать одинвидовкак известно, происходит в летучих мышей(Рукокрылые), два черепах и 130 названных видов инфицировать рыб. Два вида ( Е. phocae и Е. weddelli ) заражает уплотнение. Пять видов инфицировать лам и альпака: Е. alpacae , Е. ivitaensis , Е. lamae , Е. macusaniensis и Е. punonensis . Ряд видов грызунов заражают, в том числе E. couesii , Е. kinsellai , Е. болотный , Е. ojastii и Е. oryzomysi . Другие инфицируют птица ( E. necatrix и E. tenella ), кролики ( Е. stiedae ) и крупный рогатый скот ( E. Бови , E. ellipsoidalis и E. zuernii ). Для полного списка видов, смотрите ниже.

Наиболее распространенные виды Eimeria , которые вызывают кокцидиоз у крупного рогатого скота являются Е. Бови , Е. zuernii и Е. auburnensis . В молодом, восприимчивом теленке, по оценкам, всего лишь как 50000 инфекционных ооцисты могут вызвать серьезное заболевание. Eimeria инфекции особенно разрушительными для птицеводства и обходится Соединенным Штатам более 1,5 миллиардов $ в ежегодные потери. Наиболее экономически важные виды среди домашней птицы Е. tenella , E. acervulina , и Е. максимумы . Ооцисты того , что позже было названо Eimeria steidai были впервые замечены пионерской голландской микроскопист Левенгук (1632-1723) в желчи из с кроликом в 1674. Род назван в честь немецкого зоолога Эймер (1843-1898).

содержание

Жизненный цикл

Eimeria , жизненный цикл имеет экзогенное фазу, во время которой ооцисты выделяются в окружающую среду, и эндогенную фазу, где происходит развитие паразита в кишечнике хозяина. Во время эндогенной фазы, несколько раундов бесполого размножения , или шизогонии иметь место, после чего половая дифференциация из гамет и оплодотворения происходит. Паразит передача происходит через орально-фекальный маршрут . Инфекции являются общими в сельскохозяйственных средах , где многие животные ограничены в небольшом пространстве.

ооцисты

Есть две формы ооцисты : спорообразования или поздно ооцисты и unsporulated или ранней ооцисты. Зараженные релизы хоста ооцист в окружающую среду в их unsporulated формы. Они содержат многослойные клетки стены делает их высокой устойчивость к давлению окружающей среды. После того, как отпущена, unsporulated ооцисты претерпевают мейоз при контакте с кислородом и влагой. Этот процесс известен как спорообразования и ооцисты занимает приблизительно от 2 до 7 дней , чтобы стать заразными. Спорообразования ооциста называется tetrasporic означает , что она содержит четыре спороцистов, в то время как каждый спороциста является dizoic , т.е. он содержит два спорозоитов.

После проглатывания, ооцисты претерпевают процесс , называемое Эксцистированием, в результате чего тысячи спорозоитов высвобождаются в просвет кишечника. В случае E. tenella , этот процесс , как полагают, происходит из – за комбинации ферментативной деградации и механического истирания ооциста стенки в цыпленке глотки .

Спорозоиты

В подвижные спорозоиты проникают в энтероцитов тонкой кишки, и мигрируют в соответствующие сайты развития. Вторжение опосредовано через специализированные мембраносвязанные структуры на поверхности паразита , который освобождает выделения. Это приводит к признанию и прикрепления к клетке – хозяине рецепторов . Этот процесс известен как планирующая моторика , которая сохраняется во всех видах Apicomplexa . Мембранные glyconjugates были предложены в качестве потенциальных рецепторов клетки – хозяина для Eimeria видов. После вторжения, спорозоиты перерасти в трофозоиты , затем в шизонты , где они проходят несколько этапов бесполого размножения . Это приводит во многих ядрах развивающихся в шизонте. Каждое ядро развивается в мерозоиты .

Вторжение требует формирования движущейся развязки между паразитом и хозяином клеточных мембран . В E. tenella , это включает в себя паразитные micronemes и rhoptry белки , в том числе Ron2, RON5 и АМА-2. Маловероятно , что клетка – хозяин является полностью пассивной в процессе вторжения, хотя доказательства хозяв физических сил , которые помогают в опосредовании записи паразита остается спорными.

Мерозоиты

Когда Шизонты разрыва, мерозоиты высвобождаются, которые либо идут на повторно заразить больше энтероцитов или развиться в обеих полов гамет через процесс гаметогенеза . Эти гаметы сливаются с образованием ооцистов, который затем высвобождается в неинфекционной, unsporulated формы через фекалии хозяина.

Мерозоитов вторжение также требует формирований двигающегося перехода, однако белки , участвующих в этом процессе отличается от тех , на спорозоитах. Rhoptry белки АМА-1 и RON4 встречаются исключительно на мерозоитах. Существует также большее разнообразие поверхностных антигенов вариантных обнаружено на поверхности мерозоитов. Это предположение , что это может быть связано с тем , что мерозоиты недолговечны и больше антигена репертуар позволило бы быстрее связывания и вторжения.

таксономия

Eimeria лежат в семье Eimeriidae . Eimeria приходится около 75% видов в пределах этого семейства, и это самый правдоподобный из родов Apicomplexa с 1700 описанных видов.

Попытки разделить эту большую таксономическую единицу в отдельных родах были сделаны. Классификация eimeriid кокцидии была в значительной степени основана на морфологических и жизненных деталях цикла. Совсем недавно, классификация была сделана с использованием рДНК и митохондриальных генов , которые указывают Eimeria могут быть парафилетическими к Isospora и циклоспора

Eimeria : Эти виды tetrasporocystic с dizoic, nonbivalved спороцисту с или без Stieda органов . Этот новый род сохраняет большинство видов.

Goussia (Лаббе 1896): Эти виды tetrasporocystic, dizoic, отсутствие Stieda тела, и спороциста стенысостоящие из двух створоксоединенных продольным швом. Этот род содержит около 20 видов.

Crystallospora (Thelohan 1893 г.): Этот вид этого рода tetrasporocystic и dizoic, и додекаэдрическая спороцисты состоит из двух шестиугольных, pyrimidal клапановсоединенных своих оснований шва. Этот род содержит единственный вид, Crystallospora cristalloides

Epieimeria : Разновидности в этом роде являются tetrasporocystic, dizoic, обладают Stieda тела, и подвергаются мерогониям и гаметогонии на люменальную поверхности кишечного тракта. Три вида в этом роде.

идентификация видов

Методы идентификации видов разнообразны и среди прочих, включают в себя изофермент анализ, использование рРНКа и рДНК зондов, ДНК – анализы и рекомбинантные ДНК методики. ПЦР доказала самый полезный для вспышки наблюдения. До этих методов, идентификация видов была основана на фенотипических характеристиках , такие как места развития паразита, структуры ооциста, вид хозяина, перекрестный иммунитет и наличие повреждений. Из них, сравнивая ооцист структуры был наиболее широко используемый метод.

Genomics

Все секвенирование генома проект продолжается с выбранными видами, Eimeria tenella . Генома составляет около 60 megabases в размерах и имеет GC-содержание около 53%. Эти 14 хромосом в диапазоне размеров от 1 до 6> megabases. С 2013 года , секвенирование и аннотирование еще шесть птиц Eimeria видов геномов продолжается.

Патология и симптомы

Кокцидиоз обычно приводит к диарее , потере веса и обезвоживанию . Сочетание этих факторов может привести к снижению роста и гибели животного, особенно среди молодежи. Другие клинические признаки включают летаргию , депрессию и пониженное нормальное поведение холить. Диарея может быть кровавой из – за кишечный эпителий отмирания , когда большое количество ооциста и мерозоитов вырвалось из клеток.

Тяжесть заболевания напрямую зависит от количества инфекционной Eimeria ооциста, которые глотавшие. Патогенез инфекции варьирует от легкого до тяжелого, и в значительной степени зависит от величины инфекции. В легких инфекциях, повреждение кишечника может быть только минимальным и быстро отремонтировать , как клетки быстро заменяется телом. Тем не менее, в тяжелых инфекциях может потребоваться только две недели для многих кишечных эпителиальных клеток инфицирована либо Eimeria meronts или гаметоцит. Они вызывают эпителиальные клетки лопнуть, что наносит значительный ущерб кишечника эпителиального слоя, что приводит к освобождению крови, жидкости и электролитов в кишечнике.

Профилактика и лечение

Хорошие животноводства практика и профилактическое применение антикокцидийных препаратов , которые нацелены на различных этапах жизненного цикла паразита, такие как сульфонамиды , ионофоры и толтразурил , являются предпочтительными методами профилактики заболеваний, особенно в птицеводстве.

Следующие препараты могут быть использованы для лечения кокцидиоза у скота: ампролиум , сульфаквиноксалина и сульфаметазин . Тем не менее, часто бывает более эффективным для предотвращения этого заболевания у крупного рогатого скота, которая может быть оказана помощь продуктами лазалоцид , decoquinate и монензин .

Существует растущая проблема лекарственной устойчивости , а также возможные остатки лекарств в мясе как только зарезали животное. В результате другие средства контроля в настоящее время изучаются, в частности , разработка вакцин, хотя некоторые живые ослабленные вакцины были в эксплуатации с 1950 – х годов. До сих пор лучшая практика вакцинировать птенцов , когда они вылупляются из яйца , чтобы они невосприимчивы к жизни.

Заражение Егтепа приводит к пожизненному иммунитету к данному конкретному виду паразита, но не дает перекрестную защиты от других видов. По этим причинам, вакцины для контроля представляются перспективными, из которых живут ослабленные вакцины являются наиболее эффективными. Тем не менее, поиск высоко иммуногенных антигенов и побеждающей антигенной изменчивости паразитов остается проблемой. Устойчивость к паразиту изменяется в зависимости от паразита и хозяина видов, а также на месте вторжения. CD4 + Т – клетки и интерферон гамма (γ) являются важнейшими компонентами естественного иммунитета к инфекции. Гуморальный иммунитет , играет незначительную роль в защите, и, скорее всего , опосредовано через секреторных IgA антител.

Хост-паразит отношения

Eimeria aurati – золотая рыбка ( карась Auratus )
Eimeria baueri – карась ( карась карась )
Егтеп lepidosirenis – американский чешуйчатник ( Lepidosiren рагайох )
Eimeria leucisci – обыкновенный усач ( Barbus Barbus bocagei )
Eimeria rutili – голавль ( Leuciscus Кефал cabeda ), Пиренейский Nase ( Chondrostoma Polylepis Polylepis )
Eimeria vanasi – голубой тиляпии ( Oreochromis стафилококк )

Рептилии

Eimeria amphisbaeniarum – Манна червь ящерица ( Амфисбены Манни )
Eimeria witcheri – червь ящерица Манна ( А. Манни )
Eimeria yemenensae – рок агама ( Agama yemenensis )

птицы

Eimeria acervulina – курица ( Gallus Gallus Domesticus )
Eimeria adenoeides – индейка ( Meleagris gallopavo )
Eimeria Брунетти – курица ( . Г. г Domesticus )
Eimeria colchici – фазан ( Phasianus colchicus )
Eimeria curvata – красноватый молотый голубь ( Коломбина talpacoti ), масштабируется голубь ( Scardafella squammata )
Eimeria dispersa – индейка ( М. gallopavo ), Bobwhite перепела ( Colinus virginianus )
Eimeria duodenalis – фазанов ( Phasianus colchicus )
Eimeria fraterculae – Атлантик буревестник ( Fratercula агсИса )
Eimeria gallopavonis – индейка ( М. gallopavo )
Eimeria innocua – индейка ( М. gallopavo )
Eimeria praecox – куриное ( . Г. г Domesticus )
Eimeria максимумов – куриное ( . Г. г Domesticus )
Eimeria meleagridis – индейка ( М. gallopavo )
Eimeria meleagrimitis – индейка ( М. gallopavo )
Eimeria тШз – курица ( Г. г Domesticus. )
Eimeria necatrix – курица ( Г. г Domesticus. )
Eimeria phasiani – фазан ( P. colchicus )
Eimeria ргосег – серые куропатки ( Perdix Perdix )
Eimeria purpureiceph али – красношапочный попугай ( Purpureicephalus Спурий )
Eimeria tenella – куриное ( Г. г. Domesticus )

Читайте также:  Курицы яйценоские породы

Млекопитающие

Eimeria ahsata – козел ( Capra ушная раковина ), овцы ( Ovis Aries )
Eimeria alabamensis – крупный рогатый скот ( Bos Taurus )
Eimeria alijevi – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria aspheronica – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria arloingi – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria arundeli – общий Wombat ( Vombatus Урсинус )
Eimeria bakuensis – овцы ( О. Aries )
Eimeria Bovis – крупный рогатый скот ( Б. Taurus )
Eimeria Cameli – верблюды ( Camelus bactrianus , Camelus dromedarius )
Eimeria caprina – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria caprovina – козья ( С ушной раковиной )
Eimeria christenseni – козел ( С. ушной раковиной )
Eimeria clethrionomyis – лесные полёвками ( Clethrionomys gapperi )
Eimeria coecicola – кролик ( Oryctolagus cuniculus )
Eimeria contorta – мыши ( Mus Musculus )
Eimeria couesii – рис крыса ( техасская рисовый хомяк )
Eimeria crandallis – овцы ( О. Aries )
Eimeria dammahensis – скимитары подключения орикс ( орикс dammah )
Eimeria dowleri – красный волосатохвост ( волосатохвосты Borealis )
Eimeria exigua – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria falciformis – мышь ( М. Musculus )
Eimeria farasa NII – горная газель ( Gazella газель farasani )
Eimeria ferrisi – мышь ( М. Musculus )
Eimeria желтоватый – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria gallatii – лесные полёвки ( С. gapperi )
Eimeria гранулезоклеточный – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria hirci – козел ( С. ушной раковины )
Eimeria интестиналис – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria irresidua – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria intricata – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria jolchijevi – козел ( С. ушная раковина )
Eimeria krijgsmanni – мышь ( М. Musculus )
Eimeria larimerensis – Uinta суслик ( Spermophilus Armatus )
Eimeria macusaniensis – ламы ( лама Glama ), гуанако ( лама guanicoe ), альпаки ( викунья PAÇ ), викуньи ( викунья викуньи )
Eimeria магна – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria marconii – лесные полёвки ( Clethrionomys gapperi )
Eimeria медиа – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria melanuri – садовая соня ( садовые сони quercinus )
Eimeria myoxi – садовая соня ( Е. quercinus )
Eimeria nagpurensis – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria nieschulzi – коричневая крыса ( Р. погуе )
Eimeria ninakohlyakimovae – козел ( С. ушной раковина )
Eimeria ovinoidalis – овцы ( О. Aries )
Eimeria раШйы – козел ( С. ушной раковина )
Eimeria болотный – болотный рис крыса ( Огуготуз болотный )
Eimeria papillata – мышь ( М. Musculus )
Eimeria прободающих – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria phocae – Sable Island тюлени ( Phoca vitulina )
Eimeria pileata – красная полевка ( Clethrionomys gapperi )
Eimeria Pipistrellus – средиземноморский нетопырь ( Pipistrellus kuhlii )
Eimeria грушевидный – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria prionotemni валлаби Беннета (- Macropus rufogriseus )
Eimeria procyonis – енот ( Процион lotor )
Eimeria рипсШа – коза ( C. ушной раковине )
Eimeria roobroucki – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria saudiensis – орикс ( Oryx leucoryx )
Eimeria sealanderi – красный волосатохвост ( волосатохвосты Borealis )
Eimeria separata – мышь ( М. Musculus ), крысы ( Rattus Rattus )
Eimeria stiedae – кролик ( О. cuniculus )
Eimeria ursini – южный волосатый нос вомбат ( длинношёрстные вомбаты latifrons )
Eimeria vermiformis – мышей ( М. Musculus )
Eimeria weybridgensis – овцы ( О. Aries )
Eimeria wobati – южный волосатый нос вомбат ( L. latifrons )
Eimeria zuernii – крупный рогатый скот ( Б. Taurus )

Eimeria
Eimeria maxima oocysts
Scientific classification
Clade: SAR
Infrakingdom: Alveolata
Phylum: Apicomplexa
Class: Conoidasida
Order: Eucoccidiorida
Family: Eimeriidae
Genus: Eimeria
Schneider, 1875
Type species
Eimeria falciformis [1]
Species

Eimeria is a genus of apicomplexan parasites that includes various species capable of causing the disease coccidiosis in animals such as cattle, poultry, and smaller ruminants including sheep and goats. [2] Eimeria species are considered to be monoxenous because the life cycle is completed within a single host, and stenoxenous because they tend to be host specific, although a number of exceptions have been identified. Species of this genus infect a wide variety of hosts. Thirty-one species are known to occur in bats (Chiroptera), two in turtles, and 130 named species infect fish. Two species (E. phocae and E. weddelli) infect seals. Five species infect llamas and alpacas: E. alpacae, E. ivitaensis, E. lamae, E. macusaniensis, and E. punonensis. A number of species infect rodents, including E. couesii, E. kinsellai, E. palustris, E. ojastii and E. oryzomysi. Others infect poultry (E. necatrix and E. tenella), rabbits (E. stiedae) and cattle (E. bovis, E. ellipsoidalis, and E. zuernii). [3] For full species list, see below.

The most prevalent species of Eimeria that cause coccidiosis in cattle are E. bovis, E. zuernii, and E. auburnensis. In a young, susceptible calf it is estimated that as few as 50,000 infective oocysts can cause severe disease. [4] Eimeria infections are particularly damaging to the poultry industry and costs the United States more than $1.5 billion in annual loses. [5] The most economically important species among poultry are E. tenella, E. acervulina, and E. maxima. [6] The oocysts of what was later called Eimeria steidai were first seen by the pioneering Dutch microscopist Antonie van Leeuwenhoek (1632–1723) in the bile of a rabbit in 1674. The genus is named after the German zoologist Theodor Eimer (1843–1898).

Contents

Life cycle [ edit ]

The Eimeria life cycle has an exogenous phase, during which the oocysts are excreted into the environment, and an endogenous phase, where parasite development occurs in the host intestine. During the endogenous phase, several rounds of asexual reproduction, or schizogony take place, after which the sexual differentiation of gametes and fertilisation occurs. Parasite transmission occurs via the oral-fecal route. Infections are common in farming environments where many animals are confined in a small space. [7]

Oocysts [ edit ]

There are two forms of oocyst: sporulated or late oocyst, and unsporulated or early oocyst. An infected host releases oocysts into the environment in their unsporulated form. These contain a multi-layered cell wall making them highly resistant to environmental pressures. [8] Once released, the unsporulated oocysts undergo meiosis upon contact with oxygen and moisture. [9] This process is known as sporulation and the oocysts take approximately 2 to 7 days to become infectious. [10] The sporulated oocyst is said to be tetrasporic meaning it contains four sporocysts, while each sporocyst is dizoic, i.e. it contains two sporozoites. [3]

Once ingested, the oocysts undergo a process called excystation, whereby thousands of sporozoites are released into lumen of the intestine. In the case of E. tenella, this process is thought to occur due to the combination of enzymatic degradation and mechanical abrasion of the oocyst wall in the chicken’s gizzard. [11]

Sporozoites [ edit ]

The motile sporozoites invade the enterocytes of small intestine, and migrate to their respective sites of development. Invasion is mediated through specialised membrane-bound structures on the surface of the parasite that release secretions. This results in the recognition of, and attachment to host cell receptors. This process is known as gliding motility, which is conserved across all species of Apicomplexa. Membrane glyconjugates have been proposed as potential host cell receptors for Eimeria species. [12] After invasion, the sporozoites develop into trophozoites, then into schizonts, where they undergo several rounds of asexual reproduction. This results in many nuclei developing within the schizont. Each nucleus develops into a merozoite. [3]

Invasion requires the formation of a moving junction between parasite and host cell membranes. In E. tenella, this involves parasite micronemes and rhoptry proteins including RON2, RON5 and AMA-2. [11] It is unlikely that the host cell is completely passive in the invasion process, although evidence of host physical forces that assist in mediating parasite entry remains controversial.

Merozoites [ edit ]

When schizonts rupture, merozoites are released, which either go on to re-infect more enterocytes or develop into either male or female gametes via the process of gametogenesis. These gametes fuse to form an oocyst, which is then released in its non-infectious, unsporulated form through the faeces of the host.

Merozoite invasion also requires the formation of a moving junction, however the proteins involved in this process differs from those on sporozoites. Rhoptry proteins AMA-1 and RON4 are found exclusively on merozoites. There is also a greater diversity of variant surface antigens found on the surface of merozoites. It is hypothesised that this may be due to the fact that merozoites are short-lived and a greater antigen repertoire would permit faster binding and invasion. [11]

Taxonomy [ edit ]

The Eimeria lie within the family Eimeriidae. Eimeria accounts for close to 75% of the species within this family, and it is the most specious of the genera of the Apicomplexa with 1,700 described species. [13]

Attempts to subdivide this large taxonomic unit into separate genera have been made. The classification of eimeriid coccidian was largely based on morphological and life cycle details. [14] More recently, classification has been done using rDNA and mitochondrial genes, which indicate Eimeria may be paraphyletic to Isospora and Cyclospora [15]

Eimeria: These species are tetrasporocystic with dizoic, nonbivalved sporocysts with or without Stieda bodies. This new genus retains the majority of the species. [13]

Читайте также:  Говяжье легкое для щенка

Goussia (Labbe 1896): These species are tetrasporocystic, dizoic, lack Stieda bodies, and have sporocyst walls consisting of two valves joined by a longitudinal suture. This genus contains about 20 species. [16]

Crystallospora (Thelohan 1893): The species in this genus is tetrasporocystic and dizoic, and have dodecahedral sporocysts composed of two hexagonal, pyrimidal valves joined at their bases by a suture. This genus contains a single species, Crystallospora cristalloides

Epieimeria: The species in this genus are tetrasporocystic, dizoic, possess Stieda bodies, and undergo merogony and gametogony on the lumenal surface of the intestinal tract. Three species are in this genus. [17]

Species identification [ edit ]

Methods for species identification are varied and among others, include isozyme analysis, [18] the use of rRNA and rDNA probes, [19] DNA assays and recombinant DNA techniques. [20] [21] [22] PCR has proven most useful for outbreak surveillance. [23] Prior to these methods, species identification was based on phenotypic characteristics such as the site of parasite development, the oocyst structure, the host species, cross immunity and the presence of lesions. Out of these, comparing oocyst structures was the most commonly used method. [24] [3]

Genomics [ edit ]

A whole genome sequencing project is in progress with chosen species, Eimeria tenella. The genome is about 60 megabases in size and has a GC-content around 53%. The 14 chromosomes range in size from 1 to > 6 megabases. Since 2013, the sequencing and annotation of a further six avian Eimeria species genomes is in progress. [25]

Pathology and symptoms [ edit ]

Coccidiosis typically results in diarrhoea, weight loss and dehydration. A combination of these factors may result in poor growth and death of the animal, particularly amongst young. [10] Other clinical signs include lethargy, depression, and reduced normal grooming behaviour. [26] Diarrhoea may be bloody due to intestinal epithelium dying off when a large number of oocysts and merozoites burst out of the cells.

The severity of the disease is directly dependent on the number of infective Eimeria oocysts that are ingested. [27] The pathogenesis of infection varies from mild to severe, and is largely dependent on the magnitude of infection. [28] In light infections, the damage to the gut might only be minimal and be rapidly repaired as cells are rapidly replaced by the body. However, in heavy infections, it may only take two weeks for many intestinal epithelial cells to be infected with either Eimeria meronts or gametocytes. These cause the epithelial cells to burst, which causes significant damage to the intestine epithelial layer, resulting in the release of blood, fluid, and electrolytes into the intestine. [29]

Prevention and treatment [ edit ]

Good animal husbandry practices and prophylactic application of anticoccidial drugs that target different stages of the parasite lifecycle, such as sulfonamides, ionophores and toltrazuril, are the preferred methods of disease prevention, particularly in the poultry industry. [7] [2]

The following drugs can be used for treatment of coccidiosis in cattle: amprolium, sulfaquinoxaline, and sulfamethazine. However, it is often more effective to prevent this disease in cattle, which can be aided by the products lasalocid, decoquinate, and monensin. [29]

There is a growing problem of drug resistance, as well as possible drug residues in the meat once the animal is butchered. As a result, other avenues of control are being explored, particularly vaccine development, although several live attenuated vaccines have been in use since the 1950s. [30] So far, the best practice is to vaccinate the chicks once they hatch from the egg so they are immune for life.

Infection with Eimeria results in life-long immunity to that particular parasite species, but does not give cross protection against other species. For these reasons, vaccines for control seem promising, of which live attenuated vaccines are most effective. However, the search for highly immunogenic antigens and overcoming antigenic variation of the parasites remains a challenge. Immunity to the parasite varies depending on parasite and host species, as well as the site of invasion. CD4+ T cells and interferon gamma (γ) are crucial components of natural immunity to infection. [31] Humoral immunity is thought to play little role in protection, and is most likely mediated through secretory IgA antibodies. [12]

Host-parasite relations [ edit ]

Fish [ edit ]

Eimeria aurati – goldfish (Carassius auratus)
Eimeria baueri – crucian carp (Carassius carassius)
Eimeria lepidosirenis – South American lungfish (Lepidosiren paradoxa)
Eimeria leucisci – common barbel (Barbus barbus bocagei)
Eimeria rutili – European chub (Leuciscus cephalus cabeda), Iberian nase (Chondrostoma polylepis polylepis)
Eimeria vanasi – blue tilapia (Oreochromis aureus)

Reptiles [ edit ]

Eimeria amphisbaeniarum – Mann’s worm lizard (Amphisbaena manni)
Eimeria witcheri – Mann’s worm lizard (A. manni)
Eimeria yemenensae – rock agama (Agama yemenensis)

Birds [ edit ]

Eimeria acervulina – chicken (Gallus gallus domesticus)
Eimeria adenoeides – turkey (Meleagris gallopavo)
Eimeria brunetti – chicken (G. g. domesticus)
Eimeria colchici – common pheasant (Phasianus colchicus)
Eimeria curvata – ruddy ground dove (Columbina talpacoti), scaled dove (Scardafella squammata)
Eimeria dispersa – turkey (M. gallopavo), bobwhite quail (Colinus virginianus)
Eimeria duodenalis – pheasant (Phasianus colchicus)
Eimeria fraterculae – Atlantic puffin (Fratercula arctica)
Eimeria gallopavonis – turkey (M. gallopavo)
Eimeria innocua – turkey (M. gallopavo)
Eimeria praecox – chicken (G. g. domesticus)
Eimeria maxima – chicken (G. g. domesticus)
Eimeria meleagridis – turkey (M. gallopavo)
Eimeria meleagrimitis – turkey (M. gallopavo)
Eimeria mitis – chicken (G. g. domesticus)
Eimeria necatrix – chicken (G. g. domesticus)
Eimeria phasiani – pheasant (P. colchicus)
Eimeria procera – grey partridges (Perdix perdix)
Eimeria purpureicephali – red-capped parrot (Purpureicephalus spurius) [32]
Eimeria tenella – chicken (G. g. domesticus)

Mammals [ edit ]

Eimeria ahsata – goat (Capra hircus), sheep (Ovis aries)
Eimeria alabamensis – cattle (Bos taurus)
Eimeria alijevi – goat (C. hircus)
Eimeria aspheronica – goat (C. hircus)
Eimeria arloingi – goat (C. hircus)
Eimeria arundeli – common wombat (Vombatus ursinus)
Eimeria bakuensis – sheep (O. aries)
Eimeria bovis – cattle (B. taurus)
Eimeria cameli – camels (Camelus bactrianus,Camelus dromedarius)
Eimeria caprina – goat (C. hircus)
Eimeria caprovina – goat (C. hircus)
Eimeria christenseni – goat (C. hircus)
Eimeria clethrionomyis – red-backed vole (Clethrionomys gapperi)
Eimeria coecicola – rabbit (Oryctolagus cuniculus)
Eimeria contorta – mouse (Mus musculus)
Eimeria couesii – rice rat (Oryzomys couesi)
Eimeria crandallis – sheep (O. aries)
Eimeria dammahensis – scimitar-homed oryx (Oryx dammah)
Eimeria dowleri – eastern red bat (Lasiurus borealis)
Eimeria exigua – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria falciformis – mouse (M. musculus)
Eimeria farasanii – mountain gazelle (Gazella gazelle farasani)
Eimeria ferrisi – mouse (M. musculus)
Eimeria flavescens – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria gallatii – red-backed vole (C. gapperi)
Eimeria granulosa – goat (C. hircus)
Eimeria hirci – goat (C. hircus)
Eimeria intestinalis – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria irresidua – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria intricata – goat (C. hircus)
Eimeria jolchijevi – goat (C. hircus)
Eimeria krijgsmanni – mouse (M. musculus)
Eimeria larimerensis – Uinta ground squirrel (Spermophilus armatus)
Eimeria macusaniensis – llamas (Lama glama), guanacos (Lama guanicoe), alpacas (Vicugna pacos), vicunas (Vicugna vicugna)
Eimeria magna – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria marconii – red-backed vole (Clethrionomys gapperi)
Eimeria media – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria melanuri – garden dormouse (Eliomys quercinus)
Eimeria myoxi – garden dormouse (E. quercinus)
Eimeria nagpurensis – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria nieschulzi – brown rat (R. norvegicus)
Eimeria ninakohlyakimovae – goat (C. hircus)
Eimeria ovinoidalis – sheep (O. aries)
Eimeria pallida – goat (C. hircus)
Eimeria palustris – marsh rice rat (Oryzomys palustris)
Eimeria papillata – mouse (M. musculus)
Eimeria perforans – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria phocae – Sable Island harbour seals (Phoca vitulina)
Eimeria pileata – red-backed vole (Clethrionomys gapperi)
Eimeria pipistrellus – Kuhl’s pipistrelle (Pipistrellus kuhlii)
Eimeria piriformis – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria prionotemni – Bennett’s wallaby (Macropus rufogriseus)
Eimeria procyonis – raccoon (Procyon lotor)
Eimeria punctata – goat (C. hircus)
Eimeria roobroucki – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria saudiensis – Arabian oryx (Oryx leucoryx)
Eimeria sealanderi – eastern red bat (Lasiurus borealis)
Eimeria separata – mouse (M. musculus), rat (Rattus rattus)
Eimeria stiedae – rabbit (O. cuniculus)
Eimeria ursini – southern hairy nosed wombat (Lasiorhinus latifrons)
Eimeria vermiformis – mice (M. musculus)
Eimeria weybridgensis – sheep (O. aries)
Eimeria wobati – southern hairy-nosed wombat (L. latifrons)
Eimeria zuernii – cattle (B. taurus)

Малярийный плазмодий особенности организации, жизненный цикл.

В кровь человека паразит попадает с укусом комара рода Anopheles. Спорозоиты очень мелкие тонкие червеобразные одноядерные клетки.

Заражение человека происходит при укусе комара, в слюне которого содержатся плазмодии на стадии спорозоита. Они проникают в кровь, с током которой оказываются в ткани печени. Здесь происходит тканевая (преэритроцитарная) шизогония. Она соответствует инкубационному периоду болезни. В клетках печени из спорозоитов развиваются тканевые шизонты, которые увеличиваются в размерах и начинают делиться шизогонией на тысячи дочерних особей. Клетки печени при этом разрушаются, и в кровь попадают паразиты на стадии мерозоита. Они внедряются в эритроциты, в которых протекает эритроцитарная шизогония. Паразит поглощает гемоглобин клеток крови, растет и размножается шизогонией. При этом каждый плазмодий дает от 8 до 24 мерозоитов. Развитие плазмодиев в эритроцитах проходит четыре стадии: кольца (трофозоита), амебовидного шизонта, фрагментации (образования морулы) и (для части паразитов) образования гаметоцитов. При разрушении эритроцита мерозоиты попадают в плазму крови, а оттуда – в новые эритроциты. Цикл эритроцитарной шизогонии повторяется много раз. Рост трофозоита в эритроците занимает время, постоянное для каждого вида плазмодиев. Приступ лихорадки приурочен к выходу паразитов в плазму крови и повторяется каждые 3 либо 4 дня, хотя при длительно текущем заболевании чередование периодов может быть нечетким.

Читайте также:  Владмама форум мишань

Из части мерозоитов в эритроцитах образуются незрелые гамонты, которые являются инвазивной стадией для комара. При укусе комаром больного человека гамонты попадают в желудок комара, где из них образуются зрелые гаметы. После оплодотворения образуется подвижная зигота (оокинета), которая проникает под эпителий желудка комара. Здесь она увеличивается в размерах, покрывается плотной оболочкой, формируется ооциста. Внутри нее происходит множественное деление, при котором образуется огромное количество спорозоитов. Затем оболочка ооцисты лопается, плазмодии с током крови проникают во все ткани комара. Больше всего их скапливается в его слюнных железах. Поэтому при укусе комара спорозоиты могут проникнуть в организм человека.

Таким образом, у человека плазмодий размножается только бесполым путем – шизогонией. Человек – это промежуточный хозяин для паразита. В организме комара протекает половой процесс – образование зиготы, образуется множество спорозоитов (идет спорогония). Комар – это окончательный хозяин, он же и переносчик.

Эймерия, особенности организации, жизненный цикл.

ЭЙМЕРИИ (Eimeria), род простейших подкласса кокцидий. Свыше 1000 видов. Внутриклеточные паразиты имеют вид округлых или овальных клеток . Паразиты кишечника преимущественно позвоночных. Снаружи тело покрыто 3 мембраной оболочкой под ней расположен, система трубчатых фибрилл, вместе с пелликулой они образуют наружный скелет.

Жизненный цикл эймерий состоит из 3 стадий: шизо-, гамето- и спорогония. Две первые совершаются в организме хозяина, третья – во внешней среде.

Шизогония— бесполое множественное размножение. Оно начинается сразу после заражения животных. При этом эймерий в стадии зрелой ооцисты, прошедшей спорогонию, попадают с кормом или водой в желудок, где превращаются в спорозоиты. Последние проникают в эпителий слизистой кишечника. Там они растут и превращаются в многоядерные клетки —первое поколение шизогониии. В них формируются мерозоиты. Как только этот процесс завершается, шизонт распадается, освободившиеся мерозоиты проникают в эпителиальные клетки кишечнику и образуют шизогонию второго, третьего, Гаметогония — половой процесс, следующий за шизогонией. При нем из последней генерации шизонтов формируются макро- и микрогаметоциты, которые через определенное время развиваются соответственно в макро- (женские особи) и микрогаметы (мужские особи). Они сливаются между собой и образуют зиготы. Наконец, из зигот формируются ооцисты, которые выделяются во внешнюю среду.

Спорогонияможет совершаться только при наличии соответствующих условий (тепло, влага и кислород). Длится она 2—3 дня. При этом цитоплазма ооцист уплотняется и делится на 4 споробласта.

GREGARININA Грегарины паразитируют в кишечнике и различных полостях у беспозвоночных. Тело, покрытое пелликулой (оболочкой из наружного слоя эктоплазмы — наружного слоя цитоплазмы), червеобразное или сферическое, нередко с органоидом прикрепления на переднем конце — эпимеритом. В эктоплазме часто расположены сократительные волоконца — мионемы Сократительной вакуоли нет. Ротовое отверстие отсутствует, дыхание и питание осуществляется всей поверхностью тела. Взрослые Грегарины вступающие в фазу полового размножения соединяются попарно, образуя сизигий, который окружается цистой. Ядро каждого гамонта многократно делится, и затем вокруг каждого дочернего ядра обособляется цитоплазма. Так образуются Гаметы, которые затем сливаются попарно (копулируют), давая начало зиготам. Каждая зигота покрывается оболочкой и превращается в ооцисту. Внутри ооцисты образуется 8 мелких клеток — спорозоитов, которые при попадании в подходящего хозяина могут стать источником нового заражения. Через некоторое время они достигают взрослого состояния и цикл замыкается (рис. 2). Все Г. — гаплонты с зиготической редукцией. Диплоидна лишь зигота. Мейоз и редукция числа хромосом происходят в ооцисте при первом делении зиготы.

ИНФУЗОРИИ.

Ресничные (инфузории) тип протистов, включенных в группу Alveolata. Важно заметить, что среди них выделяют разнообразные формы представителей: прикрепленные и подвижные, колониальные и одиночные. Структура их тела бывает весьма разнообразной. Тип Инфузории характеризуется размерами тела, которые варьируются от 10 мкм до 4, 5 мм (это касается одиночных форм). Как отмечалось выше, живут они преимущественно в водоемах пресной природы, но встречаются и в морях в составе бентоса и планктона (реже – в почве или во мхах). Важно заметить, что немалая часть рассматриваемых представителей флоры является симбионтами или паразитами иных существ: рыб, кольчатых червей, моллюсков и так далее. Кроме того, многие инфузории (тому примером служит тип инфузории-туфельки) можно рассматривать в роли моделей организмов в отношении биологии на молекулярном уровне.
Систематический аспект
Следует отметить, что Инфузории – тип, навазние которого происходит от слова «настойка» (в переводе с латинского языка). Это можно объяснить тем, что первые представители простейших были обнаружены именно в настойках травяного состава. Со временем развитие данного типа начало стремительно набирать обороты. Таким образом, уже сегодня в биологии известно порядка 6-7 тысяч видов, которые включает в себя тип Инфузории. Если полагаться на данные 1980-х годов, то можно утверждать, что рассматриваемый тип содержит в своей структуре два класса: Ресничных инфузорий (имеет три надотряда) и Сосущих инфузорий. В связи с этой информацией, можно сделать вывод о том, что многообразие живых организмов весьма широко, что вызывает неподдельный интерес.
Тип Инфузории: представители
Яркими представителями данного типа выступают инфузория-балантидий и инфузория-туфелька. Отличительными особенностями этих животных являются покрытие пелликулы ресничками, которые используются для передвижения, защита инфузории посредством специально предназначенных для этого органов, трихоцистов (располагаются в эктоплазме оболочки), а также наличие в клетке двух ядер (вегетативного и генеративного). Кроме того, ротовое углубление на теле инфузории формирует ротовую воронку, которая имеет свойство переходить в клеточный рот, ведущий в глотку. Именно там и создаются вакуоли пищеварения, которые служат непосредственно для переваривания пищи. А вот непереваренные компоненты удаляются из организма через порошицу. Характеристика типа Инфузории весьма многогранна, однако основные моменты рассмотрены выше. Единственное, следует дополнить, что две сократительные вакуоли инфузории располагаются в противоположных частях тела. Именно посредством их функционирования выводится из организма избыток воды или же продукты обмена веществ.
Инфузория-туфелька
Для того чтобы качественно рассмотреть строение и образ жизнедеятельности столь интересных организмов одноклеточной структуры, целесообразным будет обратиться к соответствующему примеру. Для этого необходимы инфузории-туфельки, широко распространенные в водоемах пресной природы. Их запросто можно развести в обычных емкостях (к примеру, в аквариумах), залив луговое сено самой простой пресной водой, ведь в настойках такого типа развивается, как правило, великое множество видов простейших, в том числе и инфузории-туфельки. Так, посредством микроскопа можно на практике изучить все сведения, которые предоставлены в статье.
Характеристика инфузории-туфельки
Как отмечалось выше, Инфузории – тип, включающий в себя множество элементов, наиболее интересным из которых является инфузория-туфелька. Это одноклеточное животное, длина которого полмиллиметра, наделенное веретеновидной формой. Следует отметить, что визуально данный организм напоминает туфлю, откуда, соответственно, и столь интригующее название. Инфузория-туфелька беспрерывно пребывает в состоянии движения, а плавает она тупым концом вперед. Интересно то, что скорость ее передвижения нередко достигает 2,5 мм в секунду, что очень даже неплохо для представителя данного типа. На поверхности тела инфузории-туфельки можно наблюдать реснички, служащие двигательными органоидами. Как и все инфузории, рассматриваемый организм насчитывает в своей структуре два ядра: большое несет ответственность за питательные, дыхательные, двигательные и обменные процессы, а малое принимает участие в половом аспекте. Организм инфузории-туфельки
Устройство организма инфузории-туфельки весьма сложное. Наружным покрытием данного представителя является тонкая эластичная оболочка. Она способна в течение всей жизни сохранять правильную форму тела организма. Верными помощниками в этом служат безупречно развитые опорные волоконца, находящиеся в слое цитоплазмы, который плотно прилегает к оболочке. Поверхность тела инфузории-туфельки наделена огромным количеством (порядка 15000) ресничек, колеблющихся вне зависимости от внешних обстоятельств. У основания каждой из них располагается базальное тельце. Реснички совершают движения приблизительно 30 раз в секунду, чем толкают тело вперед. Важно отметить, что волнообразные движения данных инструментов весьма согласованны, что позволяет инфузории в процессе передвижения медленно и красиво вращаться вокруг продольной оси своего тела.
Инфузории – тип, определенно вызывающий интерес
Для абсолютного понимания всех особенностей инфузории-туфельки целесообразно рассмотреть основные процессы ее жизнедеятельности. Так, тип питания инфузории сводится к употреблению бактерий и водорослей. Тело организма наделено углублением, именуемым клеточным ртом и переходящим в глотку, на дне которой пища попадает непосредственно в вакуоль. Там она переваривается примерно час, совершая в процессе переход от кислой среды к щелочной. Вакуоли двигаются в теле инфузории посредством тока цитоплазмы, а непереваренные остатки выходят наружу в задней части тела через порошицу. Дыхание инфузории-туфельки осуществляется посредством поступления кислорода в цитоплазму через покровы тела. А выделительные процессы происходят через две сократительные вакуоли. Что касается раздражимости организмов, то инфузории-туфельки имеют свойство собираться в бактериальные комплексы в ответ на действие выделяемых бактериями веществ. А уплывают от такого раздражителя они подобно поваренной соли.
Размножение
Инфузория-туфелька может размножаться одним из двух способов. Большее распространение получило бесполое размножение, в соответствии с которым ядра делятся на две части. В результате данной операции в каждой инфузории оказывается по 2 ядра (большое и малое). Половое размножение уместно, когда наблюдаются некоторые недочеты в питании или же изменение температурного режима тела животного. Необходимо отметить, что после этого инфузория может превратиться в цисту. Но при половом типе размножения увеличение числа особей исключается. Так, две инфузории соединяются друг с другом на некоторый период времени, в результате чего происходит растворение оболочки и образование соединительного мостика между животными. Важно то, что большое ядро каждого из них бесследно исчезает, а малое проходит процесс деления дважды. Таким образом, в каждой инфузории формируется 4 дочерних ядра, после чего три из них разрушаются, а четвертое опять делится. Данный половой процесс получил название конъюгации. А продолжительность его может достигать 12 часов.

Ссылка на основную публикацию
Adblock detector